1樓：小三愛布丁
處理是整個分析過程的先決條件，是提高試驗結果準確性的重要保證。為了取得高質量、符合各種檢驗要求的標本，瞭解標本採集的方法及注意事項，必須充分認識到標本採集與處理的正確與否，直接關係到檢驗結果的準確性和臨床疾病的診斷，特別是採集標本的**要全面瞭解各種要求，掌握正確的採集方法。本科加強了對標本採集與處理的管理，5年來無一例質量問題和醫療糾紛，
標本放置過久會對生化的哪些檢驗專案產生影響？有什麼影響？
2樓：demon陌
需要看是什麼標本，血離子標本放置過久會使鉀離子升，分離膠管貯存的血標本再離心致鉀離子增高。嚴密控制標本誤差因素。
標本處理方法可以採取整個個體（甚至多個個體，如細菌、藻類等微生物，或像真菌等個體小且聚生一處者），或是一部份成為樣品，經過如物理風乾、真空、化學防腐處理等處理可製成。
3樓：匿名使用者
看什麼標本了，血離子標本放置過久會使鉀離子升..分離膠管貯存的血標本再離心致鉀離子增高。嚴密控制標本誤差因素，作為實驗分析前質控的標本質量控制應予以廣泛重視，隨著現代醫學科學技術的迅速發展，臨床檢驗技術不斷改進、完善和更新，實驗方法學研究在微量、簡便、快速、準確的基礎上，正朝著超微量、高精度、大批樣、多指標和自動化的方向發展，但是，全面質量管理和臨床醫學科研的日益深入與拓展，都對檢驗質量提出了更高的要求，而在預防性質量控制的諸多因素中，標本誤差的控制十分重要。
標本誤差，係指被檢標本在取送及儲存過程中引入的誤差，這類誤差在標本正式檢驗之前即已存在。由於臨床醫院的生化血樣多由醫護人員取送，環節多、時間長，部分醫護人員對於標本誤差因素的認識不足而未能重視，這些都可給檢驗質量帶來一定影響。本文從實驗室內外的不同角度，結合臨床上抽送生化血樣的具體情況做一些分析，供臨床同道參考。
1.採血時機和部位的選擇 生化血樣的採血時間，通常要求空腹時靜脈採血，一般都是於清晨早餐前或進食12 h後抽血[1]。這是因為進食後的不同時間內，血液中的某些化學成分有較大波動，例如糖類、脂類、蛋白質及氨基酸等，而飲水又可使血液暫時性稀釋，雖然人體具有完善的調節機制，但進食後的數小時內機體正處於代謝活躍階段，此期間血液成分的波動不應忽視；且血液生化指標參考值的調查與界定，通常以空腹血樣的檢測值為統計樣本。
為了儘可能取得檢驗條件的一致性，臨床生化血樣原則上必須堅持空腹採血[2]。
就實驗室檢測角度而言，進食後血液化學成分的改變還可給檢驗操作的本身造成困難而帶來誤差。例如，進食後血中脂質的增加不僅是使甘油三酯的含量升高，還可導致血清（血漿）呈乳白色樣渾濁（脂濁），這可給測定的比色、比濁或滴定等帶來一定干擾，然而許多生化檢驗都是用比色等分析方法進行的，這就可能干擾檢驗的準確性；又由於乳糜微粒所佔容積影響檢測加樣量的準確，故幾乎能對除甘油三酯以外的所有檢項造成負誤差；此外，血液粘度的變化也可給某些檢項帶來干擾。
另一方面，受試者抽血的空腹時間不應超過16 h，因過度飢餓會使血清蛋白、補體c3、運鐵蛋白、葡萄糖含量下降，而血膽紅素因清除率減少而上升[3]。
某些試驗有著嚴格的飲食和採血時間規定，如糖耐量試驗等，如不認真掌握，可使整個試驗失去意義。
國內有作者曾研究了空腹及餐後1～3 h部分常規生化指標的變化[4,5]，結果大多數指標變化並無統計學意義，少數有顯著變化的指標除tg、glu外亦無實際意義，但同時認為，對於中國人常食後採集生化血樣的問題，需要更多的實驗室和更大量的實驗資料來論證[4]。因此，在目前對該問題尚需充分論證和未取得廣泛共識前，生化血樣仍應以空腹採集為宜。
文獻報道acth、皮質醇、血膽紅素、血清鐵清晨高，血鈣中午最低，某些成分如膽固醇、纖維蛋白原等隨月經週期而改變[6]，對於這些生理性波動亦需有所瞭解。
必須強調注意某些藥物對生化檢驗的干擾，藥物干擾的方式可分為藥理學干擾和化學性干擾，其原理及情形相當複雜，國內外都進行了許多研究，並有專著論述[1,6~10]。例如，vit-c對許多實驗的干擾和右旋糖酐對蛋白質測定的干擾是我們較熟知的。由於臨床診治用新藥的不斷應用，使藥物干擾的問題愈加複雜，許多相關問題正在或尚待研究，故臨床醫護和檢驗人員都應當熟悉可能產生干擾的各種藥物，力求避免藥物干擾性誤差。
還有一個常被忽略的因素即體力活動，它對某些檢項結果有顯著的影響，許多與肌肉有關的酶如ck、ldh、ast等可在運動後增加，劇烈運動後血液中cr、bun、k+、p的含量可增加25%以上[6]。若不認識到運動將使ck顯著增高的特點，可能會把最健康的人誤為心肌梗塞的可疑者。
生化血樣通常抽取肘靜脈血，必要時也可採頸或股靜脈血，血氣分析的血樣則必須抽採動脈血或經充分動脈化的毛細血管血[1,12]。抽血十應避開區域性水腫、炎症部位，嚴禁於正在輸液輸血的同一肢體抽血。
受試者採血時的體位對於與蛋白質結合有關的物質及高分子量物質的濃度有一定影響，如tp、alb、pro、fe、cho、alp、acp及總脂等在站立時會增加5%以上[3, 6]，某些激素變化更明顯，從仰臥該為站立，含量在數分鐘內增加數倍[3]。有作者研究了站、坐、臥三種體位的不同組合變化對血脂7種成分的影響，認為血脂取樣當以坐姿為佳[13,14]。從兼顧多數受試者的情況而言，生化血樣的抽採體位應以坐姿為宜。
有作者主張抽血時不束扎止血帶[1]，因紮帶可造成區域性淤血、缺氧、水腫、溶血等而影響檢驗結果[1,3,6]。若確需紮帶，則不宜過緊，且不能超過1分鐘。
由上可見，醫生在決定病人做血液生化檢驗時，需要向病員進行必要的解釋，例如飲食問題、應停用的某些藥物、避免體力運動等，以取得病人的主動配合。但更重要的是：醫護技工作者應對上述諸問題有著明確的認識，並需對檢驗結果進行全面的分析、綜合與應用。
2.溶血對檢驗結果的影響和干擾 標本溶血在工作中相當多見，而溶血對許多生化檢驗都有一定程度的影響和干擾，其機理可分為如下4種型別。
2.1 對血細胞內外物質濃度不同的相應專案的影響 由於相當一些化學成分在紅細胞與血清（漿）中的濃度分佈有一定差異[1,10,17]，當標本溶血後，rbc中的成分大量進入血清（漿）中，必然使其相應成分的濃度增高，且比值（紅細胞內濃度/血漿濃度）越大，溶血越嚴重，增高就越顯著。例如k+、alt、ast 、ldh的濃度分佈比（紅細胞/血漿）分別為22.
7、20、40及160，即使輕度溶血，也可使其血清檢測值明顯增高。但若rbc內濃度低於血清（漿）濃度，即比值＜1時，則溶血相當於血清被稀釋，因而使某些血清成分的檢測值降低。
2.2 血細胞成分進入血清（漿）中因化學反應而引起的濃度改變 例如，溶血後rbc的磷脂進入血清而使血清中的磷酸酯酶水解，其結果造成血清無機磷濃度顯著增高。又如hb能將膽紅素氧化成膽綠素使血清膽紅素降低[3]。
2.3 血細胞成分作為干擾物參與血清成分的檢測反應而引起的化學性干擾 例如，hb中的fe2+可被某些試劑中的氧化劑氧化為fe3+，生成黃色的正鐵血紅素既可引起光學干擾，又因對氧化劑的消耗，因而對血清目標分析物的檢測造成負干擾。
2.4 hb本身顏色對檢測的光學干擾 hb的顏色在431和555nm波長附近能使比色、比濁法的吸光度增高，或使滴定法測定的滴定終點判辨困難而帶來誤差。
實際上，以上四類影響和/或干擾在溶血標本中同時存在並可相互作用，因而使受影響的檢項更為複雜，這在超微量、高精度和多指標的檢測分析中顯然不可忽視，因此，嚴控標本溶血是保證檢驗質量的重要方面。
3.關於抗凝問題
某些檢項的標本需用全血，有的則需用血漿，這都需要抗凝血樣,由於血液凝固是由多種凝血因子參與的連續生化反應過程，故必須設法終止凝血的某些環節才能達到抗凝目的。體外抗凝的方法較多，應根據具體檢驗專案及抗凝效果選擇之，一般都是將抗凝劑定量分裝於潔淨的試管或小瓶中備用，其劑量可抗凝3ml血液左右。臨床上送檢的抗凝血一般不過2～3ml，按說是不會凝固的。
若發生凝固則多因抽血困難，血液在針管中滯留過久、已形成細小凝絲，使抗凝劑不能發揮作用造成的；亦偶因抗凝劑散落丟失或未及時地與血液充分混勻。
需要明確指出，抗凝與非抗凝的血液決不可隨意混用或代用！需用全血或血漿的檢項不能用已經凝固或有部分凝固的血樣代替；含有k+、na+、nh4+的鹽類抗凝劑血樣分別不可用作k+、na+、氨（胺）、以及某些含氮化合物的檢測；去鈣抗凝血不能用於ca2+、mg2+、fe2+等多價金屬離子的檢測；混有血漿的血清不宜做蛋白電泳、tp檢測；含有少許凝塊的抗凝血不能用作纖維蛋白原、凝血酶原測定等等。所以對此問題不可忽視，例如錯用盛血容器、或發現非抗凝血量不足而將抗凝血新增少許用以補充等做法，都是不能允許的。
其實，抗凝血凝固常與溶血同時發生（多因抽血困難造成），若能注意採血技術的熟練、操作規範化和動作迅速，此兩者常皆可避免。
4.血液標本的及時處理
血樣抽取後應及時送檢，實驗室則應儘早進行檢驗或標本的預處理，否則放置時間過久可導致某些化學成分的改變。譬如：糖酵解使血糖降低、rbc中k+逸入使血清k+升高、cl-與co2在細胞內外的交換使血清cl-增高、co2逸散使其結果減低、以及血液ph值變化、酶活性的降低或喪失等等，如果血樣同時還有微生物的嚴重汙染及氣溫較高等情況存在時，上述變化以及影響的檢項就更加複雜。
一般說來，血液離體後30min即可進行血清分離操作，抗凝血在抽血後可立即分離血漿。如果不能及時檢驗，則應按檢項要求進行標本預處理，譬如血清分離後置冰箱儲存、製成去蛋白濾液、新增防腐劑等。需要注意血清冷藏前應移吸入另外的加塞試管，勿與血細胞共存，否則可引入溶血及其它誤差因素；用於酶學檢測的血清不宜反覆凍融，此外還應注意儲存時間不能太長，故實驗室對血樣的處理應根據其具體檢驗專案做出相應的明確規定。
5.小結
綜上所述，為控制影響血液生化檢驗質量的標本誤差因素，需注意以下幾點：
5.1 醫護人員應向受試者做出必要的檢驗前準備的解釋，特別是需提前停用的藥物及某些飲食成分等需受試者配合準備的問題。
5.2 生化檢驗的血樣應於早餐前或進食12 h後空腹靜脈採血（急症例外），禁食時間不宜超過16h，受試者臨抽血前勿做體力運動，避免情緒緊張、不要服藥飲水等。
5.3 儘可能趕在病人輸液輸血之前採血，若病人已在進行上述**，則嚴禁於正在輸液輸血的同一肢體抽血。
5.4 受試者宜以坐姿靜息後抽血，儘量不用止血帶束扎血管，或紮帶在1min內迅速完成穿刺並及時鬆帶，且紮帶不能過緊。
5.5 任何血樣均應嚴格避免溶血，故必須排除一切可能造成溶血的因素。
5.6 防止抗凝血樣凝固，需要強調採血操作的迅速、注意抗凝劑有無丟失和及時地充分混勻。
5.7 對血樣另有特殊要求的檢項，實驗室應通知臨床科室及採血者。
5.8 血樣及時送檢並儘早進行檢驗或血清血漿的分離操作，以免血液離體時間過長導致某些化學成分的改變。
5.9 對於暫時不能檢驗而需要儲存的血樣，實驗室應根據具體檢項作出明確規定，如分離血清、製成去蛋白濾液、新增防腐劑或穩定劑、儲存溫度及期限等。
5.10 建立血樣收驗制度，其中包括對血樣要求的基本觀察和查對，實驗室應拒收不合格的檢樣。
結束本文之前，以下兩點值得指出：①.某些標本誤差（如脂濁、溶血性干擾的第4種型別）雖可用樣品空白法、雙（多）波長比色法等措施進行部分校正[17]，但這既增加了檢測的繁瑣與複雜性、校正也並非能恰到好處，在大批樣、多指標的檢測中及裝置受限的實驗室中實施亦有一定困難，且仍有許多標本誤差因素是難以用上述方法校正的。
②.目前室內質控的方法對於來自被檢樣品的誤差因素，單純用質控物是不能反映出來的[18]。因此，加強分析前質量（包括標本質量）控制，是全面質量保證的重要環節。
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